A Prática de Carboidratos

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se diferem uns dos outros. Uma molécula grande formada por unidades que se repetem é denominada polímero. Deste modo, todos os carboidratos complexos são polímeros de glicose. Como estes polímeros têm um único tipo de molécula, a glicose, as diferenças entre os polissacarídeos ocorrem pelo modo em que as moléculas de glicose estão ligadas. Alguns exemplos de polissacarídeos são a celulose; que forma a parede celular das plantas e não é digerida pelo organismo de humanos, contendo cadeias lineares e o glicogênio; que atua como reserva de energia nas células animais e vegetais, contendo ramificações (NELSON; COX, 2006).

O teste de Molisch é um teste geral para carboidratos, desenvolvido pelo botânico austríaco Hans Molish. O teste baseia-se na desidratação do carboidrato pelo ácido sulfúrico concentrado, onde este rompe facilmente as ligações glicosídicas presentes em moléculas de polissacarídeos, quebrando-os e fornecendo seus monossacarídeos que vão ser desidratados, formando o furfural no caso das pentoses e hidroximetilfurfural nas hexoses. Em seguida, o derivado do furfural condensa-se com duas moléculas de α-naftol produzindo um pigmento violeta (MASTROENI; GERN, 2008).

O teste de Benedict foi desenvolvido pelo químico americano Stanley Rossiter Benedict, é usado para detectar a presença de açúcares redutores e de carboidratos em menores concentrações, podem sofrer oxidação por agentes que contém íons cúpricos pela participação de grupos aldeídos ou cetonas livres. Apresentam uma graduação de cores do azul (negativo), passando pelo verde, amarelo, laranja e vermelho para as mais concentradas (MASTROENI; GERN, 2008).

O teste de Seliwanoff é uma variação do teste de Molish que consegue diferenciar aldoses de cetoses devido a diferenças na velocidade e intensidade da reação que, sofrendo desidratação de ácidos concentrados, serão transformados em um composto vermelho com componentes incertos. Com relação ao tempo das reações as cetoses ocorrem mais rapidamente em relação às aldoses (NELSON; COX, 2006).

No teste de Lugol o comprimento e a ramificação da cadeia sacarídica são os fatores que determinam o desenvolvimento de coloração com a presença de Iodo, a instensidade da coloração depende da ramificação da cadeia, portanto quanto maior a ramificação, menos intensa é a coloração e vice-versa (NELSON; COX, 2006).

2 OBJETIVOS

2.1 Obetivo Geral

• Identificar e caracterizar os carboidratos através de testes com a utilização de reagentes.

2.2 Objetivos Específicos

• Identificar a presença de carboidratos nas reações;

• Identificar a presença ou ausência de carboidratos a partir do teste de Molisch;

• Identificar os carboidratos redutores através do reagente Benedict;

• Diferenciar, a partir do reagente Seliwanoff, aldoses de cetoses;

• Identificar polissacarídeos através do reagente Lugol.

3 MATERIAIS E MÉTODOS

3.1 Materiais e equipamentos

• 14 Tubos de ensaio;

• 2 Estantes para tubos de ensaio;

• 1 Pera;

• 3 Pipetas graduadas;

• 3 Pipetas Pasteur;

• 6 Beckers;

• Água destilada;

• Glicose;

• Sacarose;

• Frutose;

• Amido;

• Reagente Molisch;

• Reagente de Benedict;

• Ácido Sulfúrico;

• Reagente de Seliwanoff;

• Reagente de Lugol;

• Agitador de tubos;

• Capela de exaustão de gases;

• Banho-Maria para laboratório;

• Luvas;

• Papel filtro;

• Pincel.

3.2 Métodos

3.2.1 Teste 1: Identificação da presença de carboidratos – Teste de Molisch

No primeiro momento foi feita a identificação dos tubos de ensaio e das pipetas, diferenciando-se os tubos em: 1A, 1B, 1C e 1D. Em seguida foi feita a preparação em série de tubos, onde no tubo 1A foi colocado 2 mL de H2O, no tubo 1B foi adicionado 2 mL de solução glicose a 1%, no tubo 1C foi inserido 2 mL de solução de sacarose a 1% e no tubo 1D foi colocado 2 mL de solução de amido a 1%, onde nesses processos foram utilizadas as pipetas de Pasteur e graduadas.

Dando continuidade, foram adicionadas cinco gotas do reagente de Molisch em cada tubo numerado e depois agitou-se bem cada um deles no equipamento agitador de tubos. Posteriormente, na capela de exaustão de gases, inseriu-se cuidadosamente em cada tubo inclinado 1 mL de ácido sulfúrico concentrado, deixando-o escorrer lentamente pelas paredes dos tubos e, por fim, os tubos ficaram em repouso para posterior observação.

3.2.2 Teste 2: Identificação de carboidratos redutores – Reação de Benedict

No segundo teste realizado foi feita a diferenciação dos tubos de ensaio em: 2A, 2B, 2C e 2D. Preparou-se a seguinte série de tubos contendo 1 mL de H2O no tubo 2A, 1mL de solução de glicose a 1% no tubo 2B, 1mL de solução de sacarose a 1% no tubo 2C e 1mL de solução de amido a 1% no tubo 2D.

Foi acrescentado a cada um desses tubos 3 mL do reagente Benedict com o auxílio da pipeta graduada. Após isso foram aquecidos, em água fervente, por aproximadamente 3 minutos no equipamento Banho-Maria para laboratório.

3.2.3 Teste 3: Reação de Seliwanoff – Diferenciação entre aldoses e cetoses

O terceiro teste utilizou