O Relatório Bioquímica

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Caracterizações das enzimas

Reação do biureto

Foi preparado a seguinte de tubos de ensaio e identificados:

No 1º tubo com cinco gotas do filtrado extrato enzimático com mais 2 ml de água destilada e reservado

No 2º tubo com 2 ml de água destilada

Após foi agitado e adicionado e 2 ml do reagente de Biureto em cada um dos tubos, ambos foram

Reservados e comparados entre si.

Teste para Catalase

Foi preparado os seguintes tubos de ensaio:

1º foi adicionado em um tubo 5 gotas de água oxigenada 10V, e no 2º foi adicionado 5 ml do filtrado enzimático + 5 gotas de água oxigenada 10V. Após foi tampando a boca dos tubos, misturado os conteúdos por inversão, sem agitar e deixado em repouso por alguns minutos.

Teste para Peroxidade

Este procedimento não foi realizado no laboratório pois faltou o reagente Guaiacol.

2.2.1 Analises dos resultados

Na primeira etapa da parte experimental ao adicionarmos reagente de Biureto aos dois tubos de ensaio podemos percebe que o tubo 1 que continha solução enzimática após uns dez minutos apresentou em comparação com o liquido filtrado inicialmente, coloração mais clara, pelo fato do reagente de Biureto desacelerar a ação enzimática.

Já no segundo tubo não apresentou nem uma reação química. O Biureto por desacelerar ou quase inativar a enzima, demonstra uma característica inibidora em relação às enzimas.

Na segunda etapa da parte experimental, ao adicionarmos a solução de enzima ao tubo que continha água oxigenada, podemos observar após alguns minutos a formação de uma efervescência em toda a solução, essa efervescência caracteriza gotas de oxigênio, indicando que a solução de enzima por ser um catalisador aumentou a velocidade da reação e a atividade oxidativa da água oxigenada.

Já no tubo que não possui enzima catalisadora a velocidade de reação é menor se comparada ao primeiro tubo.

2.3 Ações enzimática em carboidratos e proteínas

Neste procedimento foi realizado a avaliação da atividade enzimática sobre seu substrato em diferentes meios.

Vidrarias e equipamentos:

Becker de 100 ml e 1000 ml

Tubos de ensaio de 100 ml

Pipetas graduadas

Vidro de relógio

Espátula

Suporte com garra

Papel filtro

Folha de gelatina vermelha (2x2 cm)

Solução de maisena

Suco de abacaxi (fonte da enzima bromelina)

Saliva (fonte de amilase)

Bicarbonato

Vinagre

Chapa aquecedora

Termômetro

Fita de pH

Liquidificador

Procedimento

Preparamos a solução com extrato de abacaxi, liquidificando três ou quatro fatias de abacaxi, e filtrando em papel de filtro o extrato resultante.

Em seguida colhemos dos componentes do grupo saliva fonte de amilase.

Para preparar o substrato adicionamos 200 mg de Amido em 40 ml de água em um tubo de ensaio, levamos ao banho-maria a 80 °C até que as primeiras bolhas de fervura começaram a levantar. Retiramos e deixamos esfriar em temperatura ambiente

Na primeira etapa preparamos e identificamos 3 tubos com os seguintes compostos:

1º Folha de gelatina e saliva, 1 ml de cada

2º Folha de gelatina 2x2 cm e Suco de abacaxi 1 ml

3º Folha de gelatina 2x2 cm e água 1 ml

Levamos ao banho maria à 30°C por 15 minutos, após reservamos e comparamos os resultados

Na segunda etapa preparamos e identificamos 3 tubos com os seguintes compostos:

1º Suco de abacaxi

2º Saliva

3º Apenas solução de amido

Repetimos o processo da primeira etapa.

Na última etapa do procedimento preparamos e identificamos 3 tubos com os seguintes compostos:

1º Folha de gelatina 2x2 cm e suco de abacaxi 1 ml

2º Folha de gelatina 2x2 cm e suco de abacaxi mais vinagre 1 ml de cada

3º Folha de gelatina 2x2 cm e suco de abacaxi 1 ml mais uma colher de bicarbonato

2.3.1 Analises dos resultados

4 Conclusões

As conclusões devem responder as questões da pesquisa correspondentes aos objetivos e hipóteses do trabalho. Neste capítulo, também é admitido apresentar recomendações e sugestões para trabalhos futuros.

Referências

BARROS

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