Análise Física Química Carcaça Tilápia do Nilo

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A tilápia apresenta carne de ótima qualidade, com boa aceitação no mercado consumidor, e por não apresentar espinhos na forma de “Y” no seu filé (Hildsorf, 1995) é uma espécie apropriada para a indústria de filetagem, tornando-a uma espécie de grande interesse para a piscicultura. (Boscolo et al., 2002a).

O valor nutritivo e o preço dos peixes dependem da textura da carne, da composição química, do rendimento e de fatores relacionados aos métodos de captura e beneficiamento. O conhecimento da composição química dos pescados é de fundamental importância para a padronização dos produtos alimentares a base de critérios nutricionais, pois fornece subsídios para decisões de caráter dietário (Castagnolli, 1992).

Com o presente trabalho, objetivou-se a analisar o valor de umidade, cinzas, proteína e gordura das carcaças das tilápias do Nilo submetidas a rações com valores variáveis de proteína e energia digestíveis.

- REVISÃO DA LITERATURA

A tilápia do Nilo destaca-se como uma espécie de peixe com bom potencial para piscicultura por sua rusticidade, crescimento rápido e adaptação ao confinamento (Havashi et al., 1999; Maclntosh & Little, 1995). Pode ser cultivado tanto em agua doce, quanto estuarina ou salobra (Meurer et al., 2003).

O filé de tilápia “in natura” possui em sua composição cerca de 75% de umidade, 20% de proteína bruta, 2% de minerais e uma porcentagem entre 3,4% a 8,5% de lipídeos. A qualidade e o teor de aminoácidos e ácidos graxos insaturados presente no filé, garantem um excelente valor nutricional, e sua composição pode variar em função das composições da dieta fornecida ao peixe, do manejo alimentar, da idade, do sexo e do tamanho do pescado. (Rodrigues; Jupi, 2004; Siqueira, 2001; Zapata; Martins, 1996).

Como o mercado de peixes vem se tornando cada vez mais ascendente e exigente, o peso médio de abate comercial de tilápias vem aumentando, o que consequentemente ocasiona em um maior teor de gordura depositada na carcaça (Fabricio, 2013).

Segundo Stickney e Mcgeachin (1983), a fonte de gordura utilizada na ração pode influenciar significativamente no crescimento e conversão alimentar dos peixes.

Wilson (1995), afirma que os óleos de origem vegetal são boas fontes de gordura para peixes de clima tropical, sendo que Hayashi et al. (2000) conclui que os óleos de soja, canola, girassol, linhaça, arroz e milho proporcionaram desempenho equivalente para alevinos de tilápia do Nilo. A inclusão, ou seja, quanto maior o nível de gordura dietária, maior o depósito de gordura no peixe (Cyrino, 1995; Meurer et al., 2002).

O excesso de gordura na carcaça é, atualmente, uma característica indesejável. No entanto deve-se manter um nível que não afete as características organolépticas da carne. Outro fator negativo do excesso de gordura na carcaça, é que esta acumula-se principalmente no tecido adiposo da cavidade abdominal, o que diminui a percentagem de rendimento do filé e, consequentemente, o valor comercial do peixe (Meurer et al., 2002).

Devido à grande importância da tilápia do Nilo na aquicultura, faz-se necessário, estudos com relação a sua nutrição e características de carcaça.

- MATERIAS E MÉTODOS

5.1 Amostragem

O experimento foi realizado no Laboratório de Nutrição de Organismos Aquáticos da Universidade Federal do Paraná Campus Palotina, durante o período de 120 dias. Para a análise, foram utilizados as carcaças de 35 tilápias do Nilo, com peso médio de 770 g distribuídas em 60 unidades experimentais em um delineamento fatorial 5x4 com três repetições, sendo cada unidade experimental constituída por uma caixa de fibra de vidro com 1.000 L. Após o abate e a filetagem dos peixes, um filé de cada unidade experimental foi armazenado em congelador e posteriormente moídos e homogeneizados e deste, retiradas as amostras para as análises.

5.2 Parte Experimental

5.2.1 Umidade e Cinza

s análises de umidade e cinza foram realizadas conforme técnicas da AOAC (CUNNIFF, 1998)17. Foram pesadas, em balança analítica (±0,1mg), aproximadamente 3 g de amostra, em cadinhos de porcelana previamente tarados em mufla à 600 ºC. Esses foram ser levados à estufa e mantidos a 105 ºC por 4 horas. Em seguida, os cadinhos foram transferidos para um dessecador e resfriados por aproximadamente 20 minutos. Estas operações de aquecimento e resfriamento foram repetidas até peso constante; a umidade foi determinada por gravimetria. Depois de realizada a determinação da umidade, as amostras foram colocadas em mufla a 600 ºC, por aproximadamente 6 horas ou até obtenção de uma cinza clara, sinal da ausência completa de matéria orgânica. Após, foram colocados em dessecador por 30 minutos. Foi feita a pesagem e por gravimetria a fim de determinar o teor de cinza nas amostras.

5.2.2 Proteína Bruta

A análise do teor de proteína bruta foi baseada no processo semi-micro Kjedahl, conforme técnicas da AOAC (CUNNIFF, 1998). Este método consiste de três etapas: digestão das amostras, onde o nitrogênio total é transformado em amônia e os componentes orgânicos são convertidos em gás carbônico e água; a neutralização/destilação, onde a amônia é separada e recolhida em uma solução receptora. A quantidade de nitrogênio total, é dosada e através de uma conversão apropriada, obtém-se a quantidade de proteína bruta na amostra. Foram pesados 0,40 g (± 0,1 mg) de amostra e transferidos para tubos digestores, nos quais foi adicionado cerca de 2 g de mistura catalítica (100 partes de Na2SO4 anidro; 1 parte de CuSO4.5H2O; e 0,8 parte de selênio metálico em pó) e 10,0 mL de ácido sulfúrico concentrado. Em seguida, os tubos foram ser levados ao difestor Büchi B-412 (Büchi, Suiça), utilizando uma rampa de aquecimento com percentagens de potência, variando de 30, 50, 70 e 30 % num tempo de 20 minutos cada, e mais 40 minutos para esfriar. Resfriado à temperatura ambiente, foi realizada a destilação em destilador Büchi B-323 (Büchi, Suiça) onde através de reação com hidróxido de sódio 40%, todo nitrogênio contido na amostra foi convertido em amônia, a qual foi coletada em erlenmeyer contendo solução de ácido bórico 4% e indicador (mistura de verde de bromocresol e vermelho de metila). A solução resultante foi titulada em titulador automático Dosimat 665 (Metrohm, Suiça) com ácido clorídrico 0,1 mol.L-1 padrão. As reações nas etapas de digestão,